Lithobates sylvaticus mesure de 50 à 70 mm, les femelles étant légèrement plus grandes que les mâles. Elles peuvent exceptionnellement dépasser cette taille, le record se situant à 83mm. Sa coloration varie avec des nuances de brun, crème et rouille, le ventre est clair dans les tons jaunes ou gris. Lithobates sylvaticus possède des marques noires sur son visage, habituellement appelé «masque». Elles commencent en tant que fines lignes reliant son museau à ses yeux et s'élargissant derrière les yeux. Le «masque» couvre les tympans et se rend jusqu'au épaules. Il y aussi deux crêtes dorsolatérales. Les pattes postérieures sont proportionnellement plus courtes dans les populations nordiques et ont habituellement des bandes sombres.
Œufs
Les œufs de Lithobates sylvaticus sont entouré de deux couches de gélatine protectrice et ont le dessus noir et le dessous blanc.
Têtards
Les têtards de Lithobates sylvaticus sont de coloration foncée, de teintes de brunes ou grises et ils ont des mouchetures cuivrées et dorées. Ils ont communément une bande pâle suivant la mâchoire supérieure et atteignent une taille de 6,6 centimètres.
Reproduction
La reproduction se déroule en début de printemps, avant que toute la neige n'ait fondue. Le mâle attire la femelle à l'aide de son chant. Elle pond ensuite jusqu'à 3 000 œufs qui sont fécondés par le mâle au fur et à mesure de leur ponte. Les œufs éclosent après une à trois semaines, selon la température. Les larves se métamorphosent après 7 à 18 semaines, selon une multitude de facteurs, tels que l'abondance de nourriture, la température de l'eau et la densité des têtards dans le milieu de croissance.
Lithobates sylvaticus se reproduit en étangs temporaires, puisque l'absence de poissons prédateurs dans ces milieux augmente les chances de survie des œufs et des têtards. Les sites de reproduction sont habituellement réutilisés par les mêmes individus année après année.
Les femelles atteignent la maturité sexuelle entre 3 et 6 ans et les mâle entre 2 et 4 ans.
Comme son nom commun l'indique, cette grenouille affectionne les zones humides et ombragées des milieux boisés, mais elle est aussi retrouvée dans le milieu rural. Elle est fréquemment trouvée dans les milieux humides. Les milieux de reproduction sont souvent à de grandes distances des habitats d'été et des sites d'hivernation, parfois à quelques centaines de mètres.
Hibernation
Cette espèce présente la particularité de survivre en étant complètement congelée pendant des périodes pouvant aller jusqu'à 7 mois.
Pendant l'hiver, elle s'enterre dans le sol et se met en arrêt cardiaque, le sang ne circulant presque plus dans les veines. Ce sang contient des éléments qui limitent les dégâts causés par la congélation. De fait, de l'urée et du glucose s'accumule lorsque le sang commence à geler, ce qui abaisse la température de congélation,. Ces propriétés ont été utilisées en recherche médicale, puisqu'elles pourraient servir à la congélation et à la décongélation d'organes humains attendant une greffe.
État des populations, menaces
Tous les amphibiens sont en déclin dans le monde, mais selon des mesures basées sur l'ADN environnemental, la grenouille des bois bénéficie d'une vaste aire de répartition, de nombreux réservoirs et semble mieux que d'autres survivre dans le paysage agricoles, à condition d'encore y trouver des prairies très humides, productives (riches en nourriture), avec de large zone tampon végétalisées (≥ 10 m), dans un paysage environnant hétérogène et riche en autres plans d'eau. Elle semble apprécier les eaux plutôt riches en phosphore dissous (> 0,4 mg/L) mais modérément eutrophisées par l'azote (0,1 à 0,2 mg/L) et claires (taux de chlorophylle inférieur ou égal à 15 µg/L).
LeConte (1825) Remarks on the American species of the GENERA HYLA and RANA. Annals of the Lyceum of Natural History of New-York, vol.1, p.278–282 (texte intégral).
123(en) Robert Powell, Roger Conant et Joseph T. Collins, Peterson Field Guide to Reptiles and Amphibians Fourth Edition, New York, Houghton Mifflin Harcourt Publishing Company, , 494p. (ISBN978-0-544-12997-9), p.160
↑Gabrielle E. Ruso Christy A. Morrissey Natacha S. Hogan (2019) Detecting Amphibians in Agricultural Landscapes Using Environmental DNA Reveals the Importance of Wetland Condition; Environ Toxicol Chem 23 September 2019; 38: 2750-2763 (résumé)
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